熱蛋白質(zhì)組學(xué)(Thermal Proteome Profiling,TPP)由德國海德堡的歐洲分子生物學(xué)實驗室(EMBL)的Mikhail M. Savitski教授自2014年起領(lǐng)導(dǎo)開發(fā),融合了細胞熱漂移測定(Cellular Thermal Shift Assay, CETSA)的原理和多重定量質(zhì)譜的蛋白質(zhì)組學(xué)方法,能夠監(jiān)測數(shù)千種蛋白質(zhì)的熔解曲線。自推出以來,它已被全球藥物靶點研究領(lǐng)域的科學(xué)家們廣泛認可和推崇。
TPP技術(shù)的原理是基于配體與靶蛋白結(jié)合后,通過改變其構(gòu)象、增強疏水性或形成化學(xué)交聯(lián),從而改變靶蛋白的熱穩(wěn)定性。這種穩(wěn)定性可以通過測量蛋白質(zhì)的熱變性中點溫度(Tm)來評估,即蛋白質(zhì)解折疊50%時對應(yīng)的溫度。在經(jīng)典流程中,細胞或細胞提取物被分為10份,分別在37-67℃的遞增溫度下加熱,以覆蓋大多數(shù)蛋白質(zhì)的熔點范圍。加熱后提取的可溶性蛋白質(zhì)通過穩(wěn)定同位素標記試劑TMT10進行標記,然后混合所有樣品并利用質(zhì)譜技術(shù)進行數(shù)據(jù)依賴采集(DDA)分析。通過比較有無配體結(jié)合的蛋白質(zhì)的Tm和熔解曲線,可以確定靶蛋白。
TPP實驗原理及流程
在熱蛋白質(zhì)組分析(TPP)中,數(shù)據(jù)依賴性采集(DDA)結(jié)合TMT標記技術(shù),通過多路復(fù)用樣本提高了定量精度。但隨著數(shù)據(jù)獨立采集(DIA)技術(shù)的發(fā)展,它以更高的靈敏度和更全面的蛋白質(zhì)覆蓋率,以及降低的成本和簡化的樣品制備流程,對TMT-DDA的TPP分析方法提出了有力的挑戰(zhàn),特別是在需要大規(guī)模蛋白質(zhì)組學(xué)研究的場合。。
2023年英國紐卡斯?fàn)柎髮W(xué)Maria Emilia Due?as教授在期刊J Proteome Res(IF=3.8)上發(fā)表了題為“Comparison of Quantitative Mass Spectrometric Methods for Drug Target Identification by Thermal Proteome Profiling”的研究論文,該研究比較了TPP中的兩種定量方法--TMT-DD和DIA的表現(xiàn),指出在TPP實驗方法時應(yīng)考慮實驗周期、成本、定量精度、靶點全面性等因素,以確保數(shù)據(jù)質(zhì)量和分析準確性。
樣本:急性髓系白血病(AML)的THP-1細胞系。
分組:藥物處理組(用losmapimod處理)和對照組(DMSO處理)。
數(shù)目:8個不同的溫度點(40℃, 44℃,48℃, 52℃, 56℃, 60℃, 64℃, and 68℃)進行。
重復(fù):三次生物學(xué)重復(fù)。
數(shù)據(jù)處理:五組,分別為:TMT-DDA組、Direct DIA組、DDA library組、Hybrid library組和DIA-NN組(Library free組)。
TPP不同方法比較實驗流程
TMT-DDA周期更短
對于實驗人員而言,時間就是效率。在對TMT-DDA與DIA方法的全面比較中,我們發(fā)現(xiàn)TMT-DDA以其快速的樣品準備和高效的數(shù)據(jù)分析,脫穎而出成為用時最短的方法。這對于追求實驗速度和效率的科研工作者來說,無疑是個令人欣慰的選擇。
TMT-DDA方法的樣品準備時間大約是24小時,但質(zhì)譜分析時間是75小時,使得總體時間相對較短。DIA方法的樣品準備時間大約是8小時,但質(zhì)譜分析時間需要96小時(涉及每個樣品的單次上機(single-shot)分析),因此總體時間較長。
TPP不同方法用時比較
整體蛋白檢測深度不分上下
其次關(guān)心的就是蛋白的鑒定深度了,若改變方法導(dǎo)致蛋白鑒定數(shù)目大幅下降,那無疑是得不償失了。通過對不同方法的蛋白以及肽段鑒定數(shù)目的比較,發(fā)現(xiàn)DIA-NN在蛋白質(zhì)鑒定深度上表現(xiàn)出色。雖然DDA與DIA的檢測方法差別較大,但是所有方法之間發(fā)現(xiàn)了已鑒定蛋白質(zhì)組的相當(dāng)大的重疊,與之前的研究一致, DIA方法和TMT-DDA之間平均67%的蛋白質(zhì)組是共有的。
TPP不同方法蛋白鑒定深度比較
熱熔曲線擬合不分上下
在熱蛋白組分析(TPP)中,蛋白鑒定數(shù)目是評估分析方法性能的一個關(guān)鍵指標,但并非唯一標準。研究指出,DIA-NN在低溫條件下鑒定的蛋白質(zhì)數(shù)目更多,而TMT-DDA在高溫條件下表現(xiàn)更佳,而高低溫的數(shù)據(jù)對于生成可靠的熔解曲線至關(guān)重要。在擬合熱熔曲線時,只有滿足R2≥0.8和平臺值≤0.3的曲線才被納入分析,以確保蛋白質(zhì)熔點計算的準確性。TMT-DDA平均量化了4497個蛋白的曲線,而DIA-NN生成了4458條曲線,略少于TMT-DDA。此外在選擇分析方法時需考慮實驗設(shè)計和目標蛋白熔點的特性,以確保數(shù)據(jù)質(zhì)量和分析準確性。
TPP不同方法蛋白擬合曲線比較
TMT的壓縮效應(yīng)
在TPP分析中,TMT標記可能會影響測量敏感度。研究以藥物losmapimod的已知靶標MAPK14為例,發(fā)現(xiàn)DIA成功實現(xiàn)了從對照組的44.6 ± 0.1°C到實驗組的50.0 ± 0.3°C的精確溫度變化測量。相比之下,TMT-DDA方法測得的MAPK14的熔解溫度比DIA平均高出0.9°C,這可能源于前體離子共分離導(dǎo)致的定量準確性降低,比率壓縮造成的熱位移測量不足,DIA方法顯示出對熱穩(wěn)定性微小變化的高敏感性。
藥物靶點MAPK14在不同檢測方法中的表現(xiàn)
TMT-DDA熱位移定量精度更佳
在評估熔解曲線的蛋白質(zhì)的熱位移時,研究觀察到LFQ-DIA相較于TMT-DDA產(chǎn)生了略高的平均熱位移(0.6 ± 1 °C對比-0.2 ± 1 °C),暗示了LFQ-DIA在定量上的微弱不精確性。此外,在較高溫度下,LFQ-DIA在熔點測定的精度上不如TMT-DDA。DIA方法在蛋白質(zhì)組成一致的樣本中最為準確,因為它依賴于可比的肽段剖面進行無標記定量。在較低溫度時,由于蛋白質(zhì)熔解較少,DIA能提供可靠的定量結(jié)果。但在較高溫度下,許多蛋白質(zhì)可能已經(jīng)達到其熔點,此時LFQ-DIA的定量準確性可能降低。因此,在涉及較高溫度范圍的實驗設(shè)計中,TMT-DDA因其在準確性和可靠性上的輕微優(yōu)勢,應(yīng)被考慮作為首選方法。
TMT-DDA熱位移定量精度更佳
TMT-DDA鑒定靶點更全面
在分析不同質(zhì)譜方法篩選藥物靶點的能力時,研究發(fā)現(xiàn)TMT-DDA技術(shù)能夠鑒定出DIA方法未能檢測到的2個靶點。其中一個蛋白靶點的熱穩(wěn)定性增加,而在DIA數(shù)據(jù)中并未被捕捉到,這提醒后續(xù)研究在方法選擇上需謹慎。此外,TMT-DDA還鑒定出另一個靶點,其在DIA數(shù)據(jù)中因生物重復(fù)間的高變異性而被濾除,這暗示TMT-DDA在處理噪聲方面可能具有更高的容忍度。這些發(fā)現(xiàn)突顯了在藥物靶點鑒定中,不同質(zhì)譜采集技術(shù)各有優(yōu)勢,同時也揭示了它們在數(shù)據(jù)解析上的特定局限性。
在評估TPP實驗的檢測方法時,盡管TMT-DDA和DIA在蛋白鑒定和曲線擬合上各有所長,但TMT-DDA以其快速的實驗周期和在高溫區(qū)域的高定量精度而更具優(yōu)勢,在熱位移定量精度上略勝一籌。然而,也需注意TMT標記可能導(dǎo)致的壓縮效應(yīng),這可能會影響Tm值的準確測量。因此,選擇最佳方法時,應(yīng)綜合成本、實驗效率、定量準確性和靶點鑒定的全面性做出選擇~
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參考文獻
[1] Savitski M M, Reinhard F B M, Franken H, et al. Tracking cancer drugs in living cells by thermal profiling of the proteome [J]. Science, 2014, 346(6205).
[2] George A L, Sidgwick F R, Watt J E, et al. Comparison of Quantitative Mass Spectrometric Methods for Drug Target Identification by Thermal Proteome Profiling [J]. Journal of Proteome Research, 2023, 22(8): 2629-2640.
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